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编号:10497018
固相萃取-反相高效液相色谱法测定全血环孢素A
http://www.100md.com 《中国医院药学杂志》 1999年第5期
     作者:田辉凯 徐凯建 樊宏伟 吴琳华 徐颖

    单位:哈尔滨医科大学附属第二医学院临床药学药物研究所 哈尔滨150086

    关键词:环孢素A;高效液相色谱法;药物分析

    中国医院药学杂志990509 摘要 目的:采用快速固相萃取-反相高效液相色谱法测定全血环孢素A。方法:全血用水溶血,用乙腈和水混合液沉淀蛋白后,用SPE固相萃取柱萃取,50%甲醇冲洗杂质,95%甲醇洗脱,挥干,乙腈重组,正己烷进一步除去杂质,重组液上机。本法采用柱温为70℃的C18反相色谱柱,以乙腈∶甲醇∶水(3∶1∶1,V∶V)为流动相,检测波长210 nm。结果:本法最低检出浓度为20 ng.ml-1。至少在40~1 500 ng.ml-1范围内呈线性。平均方法回收率102.9%,RSD均在10%以内。结论:本法灵敏,特异,既适合临床常规检测又适合CsA的药动学研究。
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    Quick determination of cyclosporine A in human whole blood by reversed-phase Liquid Chromatography with solid-phase extration

    Tian Huikai,Xu Kaijian,Fan Hongwei,et al. (The Second Hospital,Harbin Medical University,Harbin 150086)

    ABSTRACT OBJECTIVE:To develop a reversed-phase liquid chromatographic method utilizing,a solid-phase extraction procedure for the determination of cyclosporine A (CsA) in human whole blood.METHODS:The drug was extracted from whole blood by solid-phase extraction,then separated isocratically using a C18 column and a mobile phase of acetonitrile-methanol-water (3∶1∶1).The column temperature was maintained at 70℃.The wavelength used for detection was 210nm. The cyclosporine D was used as interal standard.RESULTS:The lowest limit of detection of CsA was 20ng.ml-1.A linear relationship was good at least from 40ng.ml-1 to 1500ng.ml-1.The average recoveries of CsA were 102.9% for whole blood.RSD values of within-day and between-day were all lower than 10%.CONCLUSIONS:The method is simple and accurate.It is suitable not only for routine determination of CsA but also for the study of pharmacokinetics of CsA.
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    KEY WORDS cyclosporine A,HPLC,Pharmaceutical analysis

    环孢素A(Cyclosporine A,CsA)是一种强效、 高选择性的免疫抑制剂,临床上广泛用于器官移植和其它疾病的治疗[1.2]。由于CsA体内过程个体差异大,治疗窗窄,因此应在治疗过程中常规监测其血药浓度,以减少毒副反应的发生,优化给药方案。目前测定CsA的各种免疫分析方法不同程度地受其代谢物的干扰,特异性和准确性差。实际中采用高效液相色谱(HPLC)法较多,由于全血样品成份复杂,国内外报道均需液-液萃取等多重步骤提取,操作复杂,检测时间长,难以适应临床常规监测的要求[3.4]。本文推荐一种全血样品的快速固相萃取方法,操作简便,回收率高,适于临床常规药物监测,对于CsA的药动学和生物利用度研究,以及药物剂型的改进也具有重要意义。

    1 仪器与试药
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    1.1 仪器 美国Waters公司2010高效液相色谱系统(616泵,717自动进样器,996紫外二级管矩阵检测器,柱温箱,Millennium2010色谱管理系统和在线脱气机);纯水制备仪(美国Millipore公司);DL-1固相萃取(SPE)样品净化富集预处理器(大连化学物理研究所);SPE固相萃取预处理小柱(C18,100,200,400 mg/支,大连化学物理研究所)。

    1.2 试剂 甲醇和乙腈为色谱纯;正己烷和磷酸为分析纯;水为超纯水。

    1.3 药品 CsA标准品和作内标的环孢素D标准品(福建省微生物研究所)。

    2 方法

    2.1 样品预处理 取1ml肝素化抗凝全血,加入1.5 ml水,旋涡振荡20 s,除空白管外均加入2ml内标应用液(乙腈∶水,3∶10,600 ng.ml-1),空白加入不含内标的乙腈∶水(3∶10)溶液2 ml,振荡20 s,以3 000 r.min-1离心2 min。安装样品净化富集预处理器,活化SPE小柱(方法:先用10 ml甲醇冲柱,再用10 ml水冲柱),上清液倾入柱中,以15%乙腈1 ml 冲洗,50%甲醇4 ml 冲洗,抽干,95%甲醇1 ml洗脱,收集洗脱液,40℃水浴,氮气挥干。残渣用200 μl乙腈溶解,用正已烷1 ml萃取两次,上层弃去,下层上机,进样量20 μl。
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    2.2 色谱条件 柱:C18不锈钢柱(250 mm×4.6 mm,10 μm),柱温:70℃,流动相:乙腈∶甲醇∶水(3∶1∶1),流速:1.5 ml.min-1,检测波长:210 nm。

    3 结果

    3.1 色谱行为 无内源物质和其它药物干扰,CsA内标达基线分离,分离度大于1.5。CsA和环孢素D(内标)的保留时间分别为7.5 min和9.0 min,色谱分析在12 min内完成。见图1,2。

    图 1 空白全血色谱图

    图 2 样品色谱图 a:CsA b:CsD

    3.2 标准曲线的制备 取肝素化全血1 ml,精密加入不同量的CsA标准品,配制成浓度分别为40,100,200,500,1 000,1 500 ng.ml-1的全血标准液。按样品预处理过程操作,记录峰高,求出峰高比,以浓度X对峰高比Y作线性回归,得回归方程:Y=0.012 0+0.001 5X,r=0.999 3。全血CsA浓度与峰高比的线性关系良好,至少在40~1 500 ng.ml-1范围内呈线性。
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    3.3 最低检测限 以信噪比(S/N)等于3计,本法的最低检测限2 ng,最低检测浓度为20 ng.ml-1

    3.4 回收率实验 取肝素化全血1 ml,精密加入不同量的CsA标准品,配制成浓度分别为40,100,500,1 000 ng.ml-1的全血标准液。按样品预处理过程操作,记录峰高,计算回收率,结果见表1。

    表1 全血中CsA的回收率(±s,n=5) 浓度/ng.ml-1

    提取回收率/%

    RSD/%

    方法回收率/%

    RSD/%
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    40

    90.0±5.3

    6.8

    107.8±5.8

    5.4

    100

    88.0±4.6

    5.3

    106.5±6.7

    6.3

    500

    89.4±4.6

    5.1
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    96.2±4.3

    4.6

    1000

    83.8±4.7

    4.1

    101.9±5.3

    5.2

    3.5 方法的精密度实验 取肝素化健康献血者全血配制成3个浓度的全血CsA样品,取1 ml按全血样品预处理过程操作,测得日内和日间相对标准偏差,结果见表2。表2 方法的日内和日间精密度(±s,n=5) 浓度

    ng.ml-1

    日内精密度
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    日间精密度

    测得量/mg.ml-1

    RSD/%

    测得量/mg.ml-1

    RSD/%

    100

    106.5±6.7

    6.3

    111.4±8.7

    7.2

    500
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    481.1±21.3

    4.6

    479.5±21.3

    4.5

    1 000

    1 019.4±53.0

    5.2

    1 022.7±62.3

    6.1

    3.6 固相萃取柱间提取回收率比较 取肝素化全血1 ml,精密加入不同量的CsA标准品,配制成浓度分别为100,1 000 ng.ml-1的全血标准液,分别用大连化物所产的每支100, 200和400 mg的固相萃取柱,按样品处理过程操作,测得柱间回收率,结果见表3。表3 柱间提取回收率比较(n=5) 浓度
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    ng.ml-1

    100mg

    200mg

    400mg

    ±s

    %

    RSD

    %

    ±s

    %

    RSD

    %

    ±s
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    %

    RSD

    %

    100

    70.3±3.4

    4.9

    88.0±4.6

    5.3

    96.1±4.1

    4.2

    1 000

    63.1±8.3

    13.2
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    83.8±4.7

    4.1

    91.0±5.5

    6.0

    4 讨论

    4.1 样品的选择 一般认为样品的选择是很重要的,Britton等[5.6]的研究表明,CsA广泛分布于所有血液组分中,由于温度直接影响CsA与血浆蛋白(主要是脂蛋白)的结合率和红细胞对CsA的摄取能力,即CsA在血中的分布依赖于温度。因此测定不同温度下分离的血清(或浆)其测定结果差别很大,又由于全血与血清或血浆相比有较高的CsA浓度,并且可以排除温度效应,故本实验选用全血作为检测的样品。

    4.2 样品的预处理

    4.2.1 SPE固相萃取柱的选择 我们比较了每支100,200,400 mg固相萃取柱的提取回收率,发现在低浓度时各柱间无明显差别,但在较高浓度时100 mg柱的提取回收率明显下降,已不能满足分析要求。提示其保留CsA的能力与容量有限,而200 mg柱与400 mg柱无明显差别,均能满足分析要求,考虑到经济原因,故选用每支200 mg的固相萃取柱。
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    4.2.2 活化方法的选择 最初我们采用国外报道的方法活化柱,即先用95%甲醇3 ml冲柱,后用15%的乙腈3 ml冲柱[7.8],但在CsA出峰时总是一个很大的干扰峰干扰,经反复摸索发现,此干扰峰来自于固相萃取柱本身。为此我们更改了柱的活化方法,确定甲醇10 ml和水10 ml冲柱已完全能除去柱中杂质,消除来自在于固相萃取柱本身的干扰,且能充分活化小柱。

    4.2.3 冲洗液的选择 根据国外报道的方法用50%甲醇10 ml冲洗柱中杂质[7.8],但回收率总是很低,不能满足要求。经反复摸索发现冲洗液(50%甲醇)的用量与杂质峰和回收率相关,我们对比了应用0,1,2,3,4,5,6,8 ml的冲洗液冲洗的效果,发现4 ml的50%甲醇已能除去大部分杂质,后用1 ml的正已烷萃取两次,已能完全除去干扰物质,获得好的回收率和色谱峰。

    4.3 色谱条件

, http://www.100md.com     4.3.1 流动相的选择 最初我们应用二元流动相体系(乙腈∶水),但在CsA出峰时总有一小的干扰峰,改变流动相比例也不能分开,最后改用三元流动相(乙腈∶甲醇∶水),增加甲醇对CsA保留时间的影响不大,但使干扰峰前移,获得了很好的色谱峰。

    4.3.2 柱温的选择 测定CsA通常要求较高的柱温,大多数C18-烷基键合相柱需70℃~75℃的温度,C8-或氰基键合柱需要50℃~60℃的温度。我们观察了温度对CsA和CsD(内标)的色谱行为的影响,结果表明,升高柱温保留时间虽稍有缩短,然而峰形和分辨率确得到了有意义的改善,且在70℃~75℃时最佳。提示CsA的结构显著受分子内氢键的影响,正是这种温度依赖性结构变化影响CsA的色谱行为。

    参考文献

    1 Cohen DJ,Loertscher R,Rubin MF,et al.Cyclosporine A:a new immunosuppressive agent for organ transplantation.Ann Intern Med,1984,101:667
, http://www.100md.com
    2 Borel JF.The cyclosporines.Transplant Proc,1989,21:810

    3 梁 玉,吴莱文.高效液相色谱法测定全血环孢霉素A.中华医学检验杂志,1992,15(4):206

    4 Ajit K,Shah,Ronald J,et al.Improved Liquid-Chromatographic determination of cyclosporine and its metabolites in blood.Clin Chem,1988,34(7):1467

    5 Britton K,Atkinson K,Biggs J,et al.Distribution and binding of cyclosporine in blood.Transplant Proc,1984,16(4):961
, 百拇医药
    6 Annesley T,Giacherio D,Feldkamp C.The concentration related distribution of cyclosporine in blood.J Clin Immunoassay,1986,9:53

    7 Pokar M,Kabra,Jeffery H,et al.Solid-Phase extration and liquid chromatography for improved assay of cyclosporine in wholde blood or plasma.Clin Chem,1985,31(10):1717

    8 Gary L,Lensmeyer,Barry L,et al.Improved Liquid-Chromatographic determination of cyclosporine,with concomitant detection of a cell-bond metabolite.Clin Chem,1985,31(2):196

    (1998年7月13日收稿), http://www.100md.com