输液装置对胰岛素吸附作用的研究
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在临床护理观察中，输入含胰岛素的溶液时，病人血糖常不稳定，甚至发生低血糖。有文献报道胰岛素在输液过程中会发生丢失，主要原因是被输液装置吸附，但其被吸附的具体过程不十分清楚。针对这一问题我们作了如下研究。
1 材料与方法
1.1 实验材料
1.1.1 输液装置：①常用输液装置为中日合资天津哈娜好医材有限公司生产的一次性输液器，连接500ml液体瓶，管道及头皮针全长166cm，液体容量12ml。②输液袋为上海曹杨医药用品厂生产，管道及头皮针全长170cm，液体容量10ml。
1.1.2 一次性普通塑料试管，内加1%牛血清白蛋白0.1ml，收集样品用。
1.1.3 10%葡萄糖溶液(GS)，为我院配制的普通玻璃瓶装500ml液体。
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1.1.4 中性可溶性胰岛素注射液(RI)为诺和诺得公司生产。
1.2 实验分组
①10%GS 500ml + RI 8U(16mU/ml)，常用输液器，流速为125ml/h；②10%GS 500ml+RI 16U(32mU/ml)，常用输液器，流速为125ml/h；③10%GS 500ml + RI 16U，常用输液器，流速为62.5ml/h；④10%GS 500ml + RI 16U，输液袋，流速为125ml/h。每组试验均重复4次。
1.3 实验步骤
(1)实验中配制胰岛素溶液的塑料量杯及1ml注射器均预先用浓度为16mU/ml的胰岛素溶液室温下浸泡120分钟。
(2)分别将10%GS 500ml倒入上述塑料量杯内，并分别加入RI 8U或16U，于室温下充分混匀，用1ml注射器吸取1ml溶液置于含有1%牛血清白蛋白0.1ml试管中，为标准对照管。
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(3)将上述配制的溶液倒回500ml输液瓶或输液袋内，按常规输液方法准备，调整速度分别为62.5ml/h，或125ml/h，分组试验。
(4)从针头部位分别收集第1.0、10、20、30、40、50、60、120、240和480ml时的液体1.0ml于试管内。
(5)将收集的试管标本保存于-20℃低温冰箱内，待测胰岛素浓度。
1.4 胰岛素测定
应用人胰岛素固相放射免疫分析法进行测定(试剂盒由美国DPC公司生产)，测定前将标本用去胰岛素人血清稀释100倍。全部标本同批内测定，批内变异系数<10%。
1.5 统计方法
两组之间的差异检验采用t检验；三组以上之间的差异采用F-Q检验；实验数据均采用SAS软件包分析处理。
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2 结果
2.1 不同浓度的胰岛素液体输入过程中胰岛素浓度的变化
实验结果表明，若配制标准浓度为100%，在输液输入过程中，胰岛素浓度呈不均一性变化，呈逐渐上升趋势。当输入量在120ml以内时，胰岛素浓度低于其标准对照浓度；当输入量超过120ml时，胰岛素浓度逐渐达到甚至超过标准浓度。配制的胰岛素浓度越低，输入时浓度变化幅度越大。
2.2 不同浓度胰岛素在输入过程中吸附率和吸附量的变化
实验结果表明，高浓度(32mU/ml)的液体，胰岛素的吸附率(%)比低浓度(16mU/ml)胰岛素的吸附率低；低浓度的胰岛素液体达到吸附饱和(即吸附率为0)时所需液量比高浓度的多。 尽管胰岛素浓度不同，其吸附率有差异，但输液器对不同浓度胰岛素的绝对吸附量相近(P>0.05)。表明输液器对胰岛素吸附量是有限的。
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2.3 不同输液速度和输液装置对胰岛素吸附的影响
实验结果显示，采用配液袋输入胰岛素溶液， 胰岛素浓度高于常用输液器，且输入的浓度也比较稳定。不同速度输入的两组液体，输入的胰岛素量仅在头30ml有明显差异，随后输入的浓度两组间十分一致。
3 讨论
3.1 胰岛素溶液输入过程中引起浓度变化的机理
胰岛素溶液在流经输液装置时部分胰岛素吸附到输液器表面的现象称为吸附。相反，吸附的胰岛素被流经的液体从输液器表面冲洗到液体中的现象称为洗脱。在胰岛素液体输入的全过程中，吸附和洗脱是同时存在的，并持续不断地在进行着，处于动态变化之中。当液体输入的初始阶段，输液器表面处于空白状态，容易吸附胰岛素，不容易被洗脱，此时以吸附占优势；随着输液器表面吸附的胰岛素不断增加，吸附速度逐渐减慢，而洗脱速度却不断增快，当输液器吸附胰岛素达到饱和时，吸附的速度与洗脱的速度相等，此时吸附与洗脱的矛盾平衡。我们的实验显示，输入液体在120ml以内时，液体中胰岛素浓度低于标准浓度，说明此时主要受吸附的影响。当输入量超过120ml时胰岛素浓度逐渐达到标准胰岛素浓度，说明胰岛素吸附已达饱和；期间出现的输入液体中胰岛素浓度高于标准浓度的现象，表明此阶段中存在以洗脱占优势状态。因此，吸附和洗脱的平衡改变，是造成了液体中胰岛素浓度由低到高的变化和波动的主要原因。
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3.2 密切观察输液中后期的低血糖反应
如上所述，胰岛素输至中后段时，由于胰岛素溶液流经输液管以洗脱为主，致使液体中胰岛素浓度高于标准浓度，使胰岛素输入集中在后阶段，增加了发生低血糖的危险性。因此在临床护理工作中对输入胰岛素溶液的病人，应特别注意输液中后段的观察，预防低血糖的发生。
3.3 高浓度低速度的输入方式，确保药物浓度均匀输入
本研究表明高浓度的胰岛素溶液比低浓度的胰岛素溶液较快达到吸附饱和，而且在输入全过程中胰岛素浓度差异小；两种浓度液体的胰岛素吸附率(%)虽有差异，但绝对吸附量相近，说明输液器对胰岛素的吸附量是有限的，提示了溶液中胰岛素浓度越高其被吸附的丢失率越小。另外，不同的输液速度仅在30ml内有明显差异，随后两组间差异无显著性，提示我们输液速度对胰岛素的吸附作用影响不大。因此，在输液时选择较高浓度、低速度的输入方式，不但可使药物浓度均匀，起效时间早，且效率高。特别是在抢救危重病人时最好采用输液泵控制速度，确保均匀地输入胰岛素，使血糖得到平稳地控制。
3.4 应用输液袋输入胰岛素溶液，确保治疗的准确性
本研究结果表明，应用输液袋输入胰岛素溶液时胰岛素的吸附率低于常用输液器，吸附曲线相对平稳，输入均匀。因此我们建议有条件的情况下，对于长期大静脉输液的病人，尽量使用输液袋输入胰岛素，以利于准确的治疗。, 百拇医药
1 材料与方法
1.1 实验材料
1.1.1 输液装置：①常用输液装置为中日合资天津哈娜好医材有限公司生产的一次性输液器，连接500ml液体瓶，管道及头皮针全长166cm，液体容量12ml。②输液袋为上海曹杨医药用品厂生产，管道及头皮针全长170cm，液体容量10ml。
1.1.2 一次性普通塑料试管，内加1%牛血清白蛋白0.1ml，收集样品用。
1.1.3 10%葡萄糖溶液(GS)，为我院配制的普通玻璃瓶装500ml液体。
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1.1.4 中性可溶性胰岛素注射液(RI)为诺和诺得公司生产。
1.2 实验分组
①10%GS 500ml + RI 8U(16mU/ml)，常用输液器，流速为125ml/h；②10%GS 500ml+RI 16U(32mU/ml)，常用输液器，流速为125ml/h；③10%GS 500ml + RI 16U，常用输液器，流速为62.5ml/h；④10%GS 500ml + RI 16U，输液袋，流速为125ml/h。每组试验均重复4次。
1.3 实验步骤
(1)实验中配制胰岛素溶液的塑料量杯及1ml注射器均预先用浓度为16mU/ml的胰岛素溶液室温下浸泡120分钟。
(2)分别将10%GS 500ml倒入上述塑料量杯内，并分别加入RI 8U或16U，于室温下充分混匀，用1ml注射器吸取1ml溶液置于含有1%牛血清白蛋白0.1ml试管中，为标准对照管。
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(3)将上述配制的溶液倒回500ml输液瓶或输液袋内，按常规输液方法准备，调整速度分别为62.5ml/h，或125ml/h，分组试验。
(4)从针头部位分别收集第1.0、10、20、30、40、50、60、120、240和480ml时的液体1.0ml于试管内。
(5)将收集的试管标本保存于-20℃低温冰箱内，待测胰岛素浓度。
1.4 胰岛素测定
应用人胰岛素固相放射免疫分析法进行测定(试剂盒由美国DPC公司生产)，测定前将标本用去胰岛素人血清稀释100倍。全部标本同批内测定，批内变异系数<10%。
1.5 统计方法
两组之间的差异检验采用t检验；三组以上之间的差异采用F-Q检验；实验数据均采用SAS软件包分析处理。
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2 结果
2.1 不同浓度的胰岛素液体输入过程中胰岛素浓度的变化
实验结果表明，若配制标准浓度为100%，在输液输入过程中，胰岛素浓度呈不均一性变化，呈逐渐上升趋势。当输入量在120ml以内时，胰岛素浓度低于其标准对照浓度；当输入量超过120ml时，胰岛素浓度逐渐达到甚至超过标准浓度。配制的胰岛素浓度越低，输入时浓度变化幅度越大。
2.2 不同浓度胰岛素在输入过程中吸附率和吸附量的变化
实验结果表明，高浓度(32mU/ml)的液体，胰岛素的吸附率(%)比低浓度(16mU/ml)胰岛素的吸附率低；低浓度的胰岛素液体达到吸附饱和(即吸附率为0)时所需液量比高浓度的多。 尽管胰岛素浓度不同，其吸附率有差异，但输液器对不同浓度胰岛素的绝对吸附量相近(P>0.05)。表明输液器对胰岛素吸附量是有限的。
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2.3 不同输液速度和输液装置对胰岛素吸附的影响
实验结果显示，采用配液袋输入胰岛素溶液， 胰岛素浓度高于常用输液器，且输入的浓度也比较稳定。不同速度输入的两组液体，输入的胰岛素量仅在头30ml有明显差异，随后输入的浓度两组间十分一致。
3 讨论
3.1 胰岛素溶液输入过程中引起浓度变化的机理
胰岛素溶液在流经输液装置时部分胰岛素吸附到输液器表面的现象称为吸附。相反，吸附的胰岛素被流经的液体从输液器表面冲洗到液体中的现象称为洗脱。在胰岛素液体输入的全过程中，吸附和洗脱是同时存在的，并持续不断地在进行着，处于动态变化之中。当液体输入的初始阶段，输液器表面处于空白状态，容易吸附胰岛素，不容易被洗脱，此时以吸附占优势；随着输液器表面吸附的胰岛素不断增加，吸附速度逐渐减慢，而洗脱速度却不断增快，当输液器吸附胰岛素达到饱和时，吸附的速度与洗脱的速度相等，此时吸附与洗脱的矛盾平衡。我们的实验显示，输入液体在120ml以内时，液体中胰岛素浓度低于标准浓度，说明此时主要受吸附的影响。当输入量超过120ml时胰岛素浓度逐渐达到标准胰岛素浓度，说明胰岛素吸附已达饱和；期间出现的输入液体中胰岛素浓度高于标准浓度的现象，表明此阶段中存在以洗脱占优势状态。因此，吸附和洗脱的平衡改变，是造成了液体中胰岛素浓度由低到高的变化和波动的主要原因。
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3.2 密切观察输液中后期的低血糖反应
如上所述，胰岛素输至中后段时，由于胰岛素溶液流经输液管以洗脱为主，致使液体中胰岛素浓度高于标准浓度，使胰岛素输入集中在后阶段，增加了发生低血糖的危险性。因此在临床护理工作中对输入胰岛素溶液的病人，应特别注意输液中后段的观察，预防低血糖的发生。
3.3 高浓度低速度的输入方式，确保药物浓度均匀输入
本研究表明高浓度的胰岛素溶液比低浓度的胰岛素溶液较快达到吸附饱和，而且在输入全过程中胰岛素浓度差异小；两种浓度液体的胰岛素吸附率(%)虽有差异，但绝对吸附量相近，说明输液器对胰岛素的吸附量是有限的，提示了溶液中胰岛素浓度越高其被吸附的丢失率越小。另外，不同的输液速度仅在30ml内有明显差异，随后两组间差异无显著性，提示我们输液速度对胰岛素的吸附作用影响不大。因此，在输液时选择较高浓度、低速度的输入方式，不但可使药物浓度均匀，起效时间早，且效率高。特别是在抢救危重病人时最好采用输液泵控制速度，确保均匀地输入胰岛素，使血糖得到平稳地控制。
3.4 应用输液袋输入胰岛素溶液，确保治疗的准确性
本研究结果表明，应用输液袋输入胰岛素溶液时胰岛素的吸附率低于常用输液器，吸附曲线相对平稳，输入均匀。因此我们建议有条件的情况下，对于长期大静脉输液的病人，尽量使用输液袋输入胰岛素，以利于准确的治疗。, 百拇医药