血小板活化因子对体外培养肝细胞的作用
1中国人民解放军44医院内四科 贵州省贵阳市 550009
2中国人民解放军第三军医大学西南医院
3老年病研究所
贵州省科委社会攻关基金课题，No.871157
项目负责人 何云中国人民解放军44医院内四科 贵州省贵阳市 550009
收稿日期 1999-05-09 接收日期 1999-08-14
Subject headings platelet activating factor; hepatocytes; Kupffer cell; cell, cultured
, 百拇医药
主题词 血小板活化因子；肝细胞；Kupffer细胞；细胞，培养的
血小板活化因子(platelet activating factor, PAF)是一具有广泛生物活性的脂质递质，与内毒素有着密切的关系，后者对肝脏的损害较为明确[1]. 新近我们研究发现PAF在各型病毒性肝炎中特别是重症肝炎患者显著增高，与肝细胞坏死程度及血中内毒素水平呈正相关，提示PAF参与了内毒素介导的肝脏损害[2]. 但PAF对体外肝脏细胞是否有损害作用目前尚未见报道.
1 材料和方法
1.1 材料 胶原酶、链酶蛋白酶、PAF标准品、内毒素(LPS,O111:B4)为Sigma公司产品，RPMI1640培养液、肿瘤坏死因子(rhTNF)为Gibco公司产品，PAF受体拮抗剂WEB2170为德国Zimmer博士惠赠.
, 百拇医药
1.2 方法 PAF检查按Jouvin_Marche法[3]，根据PAF标准品引起洗涤后兔血小板聚集程度的标准曲线，计算出上清液及冻融法破坏过的细胞内PAF的含量. 丙二醛(MDA)检查按TBA法. 结果以μmol/m表示. TNF检查用双抗夹心法. 肝细胞分离培养[4]： 取Wistar大鼠(第三军医大学动物所提供)体质量180g～200g，用体外灌流法分离肝细胞，经苔盼蓝染色，存活率在95%以上用于实验，用RPMI1640液调整肝细胞浓度为2×108/L，加入终浓度为100mL/L的灭活无菌小牛血清，接种于Ⅰ型胶原. 被覆的12孔培养板(1mL/孔)，置培养箱中37℃ 50mL/L CO2孵育4h后更换培养液，继续培养至所需时间. Kupffer细胞的分离培养[5]从体外灌流法分离所得的肝细胞悬液，离心后再经1g/L链霉蛋白酶，使肝细胞分解破碎，然后500g离心10min，重复3次，得到非肝脏细胞，以RPMI1640和小牛血清培养稀释成2×109细胞/L，接种于12孔培养板在37℃ 50mL/L CO2孵育20h后，洗去非贴壁细胞，再继续培养至所需时间. 将PAF加入培养的肝细胞，观察其作用后4h上清液中LDH水平及20h后肝细胞存活率和WEB 2170的防护作用. 将PAF加入培养的Kupffer细胞作用后4h上清液中TNF及MDA水平和WEB 2170的阻断作用. 将LPS和TNF分别加入培养的Kupffer细胞作用4h后，测定上清液及细胞内PAF的量.
, http://www.100md.com
统计学处理 定量资料两组数据比较采用t检验.
2 结果
2.1 PAF对肝细胞的损伤作用 PAF可引起肝细胞培养上清液中LDH升高，肝细胞存活率下降，与剂量无明显的依赖性，可被WEB 2170显著抑制(表1).
表1 PAF对培养肝细胞上清液LDH和存活率的影响(x±s,n=10)
, 百拇医药
bP<0.01， vs 空白对照组；dP<0.01， vs 未加WEB 2170组. WEB 2170(10ug/L).
2.2 PAF对Kupffer细胞产生TNF，MDA的影响 空白对照组培养的肝Kupffer细胞上清液中测不到TNF，MDA含量也很低. PAF能显著促进Kupffer合成并释放TNF，MDA，呈剂量依赖性，可被WEB 2170显著抑制(表2).
表2 PAF对Kupffer细胞产生TNF，MDA的影响(x±s,n=10)
, 百拇医药
bP<0.01， vs 空白对照组；dP<0.01， vs 未加WEB 2170组. WEB 2170(10μg/L).
2.3 LPS，TNF对Kupffer细胞产生PAF的影响 LPS，TNF可显著促进培养Kupffer细胞上清及细胞内PAF产生(表3).
表3 LPS，TNF对Kupffer细胞产生PAF的影响(x±s,n=10)
, http://www.100md.com
bP<0.01， vs 空白对照组.
3 讨论
Kupffer细胞被认为是肠源性内毒素的“生物滤过器”，具有吞噬、清除内毒素起保护性作用，另一方面Kupffer细胞被内毒素激活化后可释放多种炎症递质如花生四烯酸，TNF，白介素，PAF等，这与Kupffer细胞所处的状态有关，正常情况下Kupffer细胞主要起保护作用，而在损害时以致伤为主[5]. 最近，我们发现内毒素血症发生率较高慢性重症肝炎患者血中PAF水平也较高；用PAF受体拮抗剂WEB 2170可减轻D-氨基半乳糖对大鼠肝脏的损害，提示PAF参与了内毒素介导的肝脏损害，与肝细胞的坏死程度呈正相关[2]. 我们采用体外PAF与肝细胞共孵，其上清中LDH水平明显增加及肝细胞的存活率明显下降. 进一步证实PAF对肝细胞的损伤作用，可能通过氧自由基介导的脂质过氧化损伤肝细胞膜性结构，并可引起肝细胞蛋白质和染色体核酸的破坏[6]，我们也发现PAF可引起肝脏细胞MDA水平升高；另一方面，如本实验用PAF作用于Kupffer细胞4h后上清中TNF水平明显升高并可被WEB2170显著抑制. PAF刺激Kupffer细胞释放其他炎性递质或细胞因子进一步说明PAF可放大内毒素参与的肝损害作用. 也有报道极低浓度PAF(10-6ng～10-11ng)就可以刺激中性粒细胞释放大量的TNF，IL-1等[7]；同时，我们也发现TNF，LPS等反过来也可刺激Kupffer细胞生成释放PAF，这些细胞因子相互间存在着复杂的网络联系，它们的产生和释放过程既可以相互激发、协同作用，诱发肝细胞损害. 总之，在以内毒素参与的肝损害中，多种细胞因子或炎性递质特别是PAF，TNF在其中有重要的作用.
, http://www.100md.com
4 参考文献
1 Fukuoka T, Nakjima Y, Nakano H. The platelet activating factor as a pivotal mediator of shock liver ischemia.
Surg Today, 1995;25:351-356
2 何云，顾长海，王宇明，郝飞. 病毒性肝炎血小板活化因子水平及其与发病机制的关系. 中华传染病杂志，1999；17：92-94
3 Nakamura T, Morita Y, Kuiyama M. Platelet activating factor in late asthmatic response. Clin Immunol, 1987;82:57-59
, http://www.100md.com
4 韩伟，成会忠，顾云娣. 大鼠肝枯否细胞分离培养与免疫活性的研究. 解剖学杂志，1998；11：71-72
5 王宇明，丁健，顾长海. 内毒素/肿瘤坏死因子所致肝细胞损伤机制的体外研究. 中华传染病杂志，1996:14-15
6 张帆，王家珑，过晋源. 血小板活化因子拮抗剂对急性肝脏损害保护作用的实验研究. 中华医学杂志，1990；70：375-378
7 Poooubelle P. PAF enchances the concomitant production of TNF and IL-1 of human monocytes. Immunology,
1991;72:181-183, http://www.100md.com(何 云1 王宇明2 何 燕3 袁凤仪1 丁 健2)
2中国人民解放军第三军医大学西南医院
3老年病研究所
贵州省科委社会攻关基金课题，No.871157
项目负责人 何云中国人民解放军44医院内四科 贵州省贵阳市 550009
收稿日期 1999-05-09 接收日期 1999-08-14
Subject headings platelet activating factor; hepatocytes; Kupffer cell; cell, cultured
, 百拇医药
主题词 血小板活化因子；肝细胞；Kupffer细胞；细胞，培养的
血小板活化因子(platelet activating factor, PAF)是一具有广泛生物活性的脂质递质，与内毒素有着密切的关系，后者对肝脏的损害较为明确[1]. 新近我们研究发现PAF在各型病毒性肝炎中特别是重症肝炎患者显著增高，与肝细胞坏死程度及血中内毒素水平呈正相关，提示PAF参与了内毒素介导的肝脏损害[2]. 但PAF对体外肝脏细胞是否有损害作用目前尚未见报道.
1 材料和方法
1.1 材料 胶原酶、链酶蛋白酶、PAF标准品、内毒素(LPS,O111:B4)为Sigma公司产品，RPMI1640培养液、肿瘤坏死因子(rhTNF)为Gibco公司产品，PAF受体拮抗剂WEB2170为德国Zimmer博士惠赠.
, 百拇医药
1.2 方法 PAF检查按Jouvin_Marche法[3]，根据PAF标准品引起洗涤后兔血小板聚集程度的标准曲线，计算出上清液及冻融法破坏过的细胞内PAF的含量. 丙二醛(MDA)检查按TBA法. 结果以μmol/m表示. TNF检查用双抗夹心法. 肝细胞分离培养[4]： 取Wistar大鼠(第三军医大学动物所提供)体质量180g～200g，用体外灌流法分离肝细胞，经苔盼蓝染色，存活率在95%以上用于实验，用RPMI1640液调整肝细胞浓度为2×108/L，加入终浓度为100mL/L的灭活无菌小牛血清，接种于Ⅰ型胶原. 被覆的12孔培养板(1mL/孔)，置培养箱中37℃ 50mL/L CO2孵育4h后更换培养液，继续培养至所需时间. Kupffer细胞的分离培养[5]从体外灌流法分离所得的肝细胞悬液，离心后再经1g/L链霉蛋白酶，使肝细胞分解破碎，然后500g离心10min，重复3次，得到非肝脏细胞，以RPMI1640和小牛血清培养稀释成2×109细胞/L，接种于12孔培养板在37℃ 50mL/L CO2孵育20h后，洗去非贴壁细胞，再继续培养至所需时间. 将PAF加入培养的肝细胞，观察其作用后4h上清液中LDH水平及20h后肝细胞存活率和WEB 2170的防护作用. 将PAF加入培养的Kupffer细胞作用后4h上清液中TNF及MDA水平和WEB 2170的阻断作用. 将LPS和TNF分别加入培养的Kupffer细胞作用4h后，测定上清液及细胞内PAF的量.
, http://www.100md.com
统计学处理 定量资料两组数据比较采用t检验.
2 结果
2.1 PAF对肝细胞的损伤作用 PAF可引起肝细胞培养上清液中LDH升高，肝细胞存活率下降，与剂量无明显的依赖性，可被WEB 2170显著抑制(表1).
表1 PAF对培养肝细胞上清液LDH和存活率的影响(x±s,n=10)
| LDH(IU/L) | t值 | 存活率% | t值 | |
| 空白对照 | 138.5±29.4 | 98.5±3.6 | ||
| PAF(10ng) | 452.9±123.4b | 7.84 | 73.1±10.2d | 7.43 |
| PAF(100ng) | 498.1±103.9b | 10.53 | 70.9±14.8d | 5.73 |
| PAF(10ng)/WEB 2170 | 169.2±30.3b | 7.06 | 86.3±9.2d | 3.04 |
| PAF(100ng)/WEB 2170 | 208.7±72.5b | 7.22 | 84.5±10.5 | 2.37 |
, 百拇医药
bP<0.01， vs 空白对照组；dP<0.01， vs 未加WEB 2170组. WEB 2170(10ug/L).
2.2 PAF对Kupffer细胞产生TNF，MDA的影响 空白对照组培养的肝Kupffer细胞上清液中测不到TNF，MDA含量也很低. PAF能显著促进Kupffer合成并释放TNF，MDA，呈剂量依赖性，可被WEB 2170显著抑制(表2).
表2 PAF对Kupffer细胞产生TNF，MDA的影响(x±s,n=10)
| 分组 | TNF(μg/g) | t值 | MDA(μmol/g) | t值 |
| 空白对照 | — | 0.13±0.02 | ||
| PAF(10ng) | 1.52±0.39b | 12.36 | 0.61±0.13d | 11.43 |
| PAF(100ng) | 2.34±0.55b | 13.45 | 0.82±0.25d | 8.73 |
| PAF(10ng)/WEB 2170 | 0.98±0.26b | 3.65 | 0.24±0.07d | 7.87 |
| PAF(100ng)/WEB 2170 | 1.31±0.29b | 5.23 | 0.37±0.18d | 4.6 |
, 百拇医药
bP<0.01， vs 空白对照组；dP<0.01， vs 未加WEB 2170组. WEB 2170(10μg/L).
2.3 LPS，TNF对Kupffer细胞产生PAF的影响 LPS，TNF可显著促进培养Kupffer细胞上清及细胞内PAF产生(表3).
表3 LPS，TNF对Kupffer细胞产生PAF的影响(x±s,n=10)
| 上清PAF | t值 | 细胞内PAF | t值 | |
| 空白对照 | 3.29±0.85 | 6.44±2.01 | ||
| LPS(30mg/L) | 17.39±5.12b | 8.59 | 15.56±3.49d | 7.18 |
| TNF(1×106μ/L) | 14.17±3.37b | 10.10 | 13.82±4.79d | 4.50 |
, http://www.100md.com
bP<0.01， vs 空白对照组.
3 讨论
Kupffer细胞被认为是肠源性内毒素的“生物滤过器”，具有吞噬、清除内毒素起保护性作用，另一方面Kupffer细胞被内毒素激活化后可释放多种炎症递质如花生四烯酸，TNF，白介素，PAF等，这与Kupffer细胞所处的状态有关，正常情况下Kupffer细胞主要起保护作用，而在损害时以致伤为主[5]. 最近，我们发现内毒素血症发生率较高慢性重症肝炎患者血中PAF水平也较高；用PAF受体拮抗剂WEB 2170可减轻D-氨基半乳糖对大鼠肝脏的损害，提示PAF参与了内毒素介导的肝脏损害，与肝细胞的坏死程度呈正相关[2]. 我们采用体外PAF与肝细胞共孵，其上清中LDH水平明显增加及肝细胞的存活率明显下降. 进一步证实PAF对肝细胞的损伤作用，可能通过氧自由基介导的脂质过氧化损伤肝细胞膜性结构，并可引起肝细胞蛋白质和染色体核酸的破坏[6]，我们也发现PAF可引起肝脏细胞MDA水平升高；另一方面，如本实验用PAF作用于Kupffer细胞4h后上清中TNF水平明显升高并可被WEB2170显著抑制. PAF刺激Kupffer细胞释放其他炎性递质或细胞因子进一步说明PAF可放大内毒素参与的肝损害作用. 也有报道极低浓度PAF(10-6ng～10-11ng)就可以刺激中性粒细胞释放大量的TNF，IL-1等[7]；同时，我们也发现TNF，LPS等反过来也可刺激Kupffer细胞生成释放PAF，这些细胞因子相互间存在着复杂的网络联系，它们的产生和释放过程既可以相互激发、协同作用，诱发肝细胞损害. 总之，在以内毒素参与的肝损害中，多种细胞因子或炎性递质特别是PAF，TNF在其中有重要的作用.
, http://www.100md.com
4 参考文献
1 Fukuoka T, Nakjima Y, Nakano H. The platelet activating factor as a pivotal mediator of shock liver ischemia.
Surg Today, 1995;25:351-356
2 何云，顾长海，王宇明，郝飞. 病毒性肝炎血小板活化因子水平及其与发病机制的关系. 中华传染病杂志，1999；17：92-94
3 Nakamura T, Morita Y, Kuiyama M. Platelet activating factor in late asthmatic response. Clin Immunol, 1987;82:57-59
, http://www.100md.com
4 韩伟，成会忠，顾云娣. 大鼠肝枯否细胞分离培养与免疫活性的研究. 解剖学杂志，1998；11：71-72
5 王宇明，丁健，顾长海. 内毒素/肿瘤坏死因子所致肝细胞损伤机制的体外研究. 中华传染病杂志，1996:14-15
6 张帆，王家珑，过晋源. 血小板活化因子拮抗剂对急性肝脏损害保护作用的实验研究. 中华医学杂志，1990；70：375-378
7 Poooubelle P. PAF enchances the concomitant production of TNF and IL-1 of human monocytes. Immunology,
1991;72:181-183, http://www.100md.com(何 云1 王宇明2 何 燕3 袁凤仪1 丁 健2)