地黄叶片器官形态建成的研究.PDF
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2006年2月23日
第1页 |
参见附件(97KB,4页)。
地黄叶片器官形态建成的研究
薛建平1 ,2
, 王汝毅1
, 张爱民1
,柳 俊2
(1.淮北煤炭师范学院 生物系 ,安徽 淮北 235000 ;
2.华中农业大学 园艺林学学院 ,湖北 武汉 430070)
[摘要] 目的:研究地黄叶片器官发生的形态建成;建立诱导地黄叶片直接再生植株和试管小地黄的最佳培
养基和培养条件。方法:从无菌脱毒苗上采取不同位置的叶片 ,接种到附加不同激素的培养基中 ,诱导叶片直接再
生植株和试管地黄。结果与结论:MS + 62BA 2. 0 mg· L - 1
培养基最适合叶片再生植株。MS + 62BA 1. 0 mg· L - 1
+
NAA 0. 5 mg· L - 1
培养基适合诱导试管地黄。最佳培养条件是光照 12 h· d - 1
,光强 2 000~3 000 lx ,温度(25 ±1)
℃。
[关键词] 地黄;叶片;再生植株;试管地黄
[中图分类号] S 567 [文献标识码] A [文章编号] 100125302 (2003) 0120021204
地黄 Rehmannia gl ut inosa L.属玄参科多年生
草本植物 ,为大宗常用药材之一。目前 ,为解决地黄
的病毒病 ,人们主要利用茎尖脱毒培养技术生产脱
毒苗 ,但降低脱毒苗的生产成本已成为限制其应用
的瓶颈[1 ]。近年来 ,国内外以地黄叶片、块根为外
植体脱分化诱导生成愈伤组织 ,再分化成再生植
株[2 ]。但这一途径往往存在变异 ,因为在愈伤组织
长期培养中 ,常可见到细胞的染色体组发生变化 ,而
表现出遗传上的不稳定性[3 ,4 ]。若利用叶片直接再
生植株 ,不经过愈伤组织阶段 ,就能保持亲本的遗传
性状 ,而且叶片取材方便 ,来源广泛 ,均一性强。试
管地黄作为一种繁殖体 ,易运输、贮存 ,可望取代脱
毒苗 ,从而降低生产成本 ,实现地黄栽培的革命性变
化。为此我们开展了地黄叶片直接再生植株和试管
地黄的研究工作 ,国内外尚未见报道。
1 材料和方法
1. 1 材料
地黄栽培品种 “8525”,采自焦作市温县农科所 ,经本院生物系郭传友鉴定为玄参科植物地黄 R .
gl ut inosa 的新鲜块根。
1. 2 培养基及培养条件
以 MS为基本培养基 ,附加不同种类和浓度的
[收稿日期] 2002206221
[通讯作者] Tel . : (0561) 3802225 E2mail :xuejp2000 @yahoo.
com. cn
植物激素 ,3. 0 %的蔗糖 ,用 0. 7 %的琼脂固化 ,pH
5. 8~6. 0。叶片以叶背面接触培养基和以叶正面接
触培养基 ,再分别作 2 个处理:一是光照培养 ,温度
(25 ±1) ℃,光照 12 h· d - 1
,光强2 000~3 000 lx ;一
是暗培养 ,温度(25 ±1) ℃。
1. 3 无菌苗的获得
将田间挖取的地下块根洗净,流水冲2 h。在超
净工作台上 ,用 70 %酒精表面消毒 30 S ,然后用
12 %的双氧水和 0. 1 %的升汞混合液消毒 10 min ,再用无菌水冲洗 5~6 次。将带芽眼的部分切成小
块放入 1 2MS 基本培养基中 ,于光照培养箱中培
养 ,15 d后可长出小植株。
1. 4 苗的继代培养
待无菌苗长至 1~2 cm时 ,在超净工作台上 ,从
基部切下 ,转至 MS + 62BA 0. 5 mg· L - 1
+ NAA 0. 5
mg· L - 1
培养基 ,于光照培养箱中继代培养。
1. 5 叶片直接再生植株诱导培养
当继代培养的苗长至 3~4 cm 时 ,从苗顶端依
次向下 ,选择色浓绿、伸展的健壮叶片 ,自叶柄处完
整剪下 ,背接或正接到添加了不同种类和浓度植物
激素的培养基上 ,每瓶中再接一个剪成碎片的不完
整叶片作为对照。然后在光照培养箱和暗培养箱中
作对照培养。
1. 6 叶片试管地黄诱导培养
叶片取材同上 ,背接到添加了不同种类和浓度
植物激素的培养基上 ,在光照培养箱和暗培养箱中
· 12 ·
第28 卷第1 期
2003 年1 月 中 国 中 药 杂 志
China Journal of Chinese Materia Medica
Vol . 28 ,No. 1
Jannuary ,2003
? 1995-2005 Tsinghua Tongfang Optical Disc Co., Ltd. All rights reserved.作对照培养。
2 结果
2. 1 叶片直接再生植株
2. 1. 1 激素种类和浓度 将在 M1 培养基中继代
植株的叶片以背面接触培养基 ,培养基中添加不同
种类和浓度的激素(表 1) 。在光照条件下 ,接种 7 d
后 ,叶龄较高的叶片边缘向叶背面卷曲 ,叶柄稍有膨
大 ,呈淡黄色;叶龄较低的叶片整个膨大、伸展。15
d后在 M5 和 M8 中叶片靠叶柄基部有芽出现 ,M5
中叶片的叶柄处愈伤组织生长慢 ,继续培养 ,苗生长
良好 ,每个叶片有 5~6 个不定芽(图 1) ,而 M8 中叶
片随培养时间延长 ,苗停止生长 ,且叶柄部愈伤组织
生长旺盛。20 d后 M1 ,M6 中叶片近基端都开始有
芽的分化 ,继续培养 , 30 d 后 ,M6 中变化不大 ,而
M1 叶片的远基端也开始有芽的分化 ,同时叶脉中部
有2~4 个彭大良好的试管地黄(图 2) 。25 d 时在
M4上叶脉个别地方有芽的分化 ,且生长缓慢。在
M7 中 ,叶片大量愈伤化 ,无芽的分化。剪成碎片的
叶片只在伤口处形成愈伤组织 ,无不定芽的形成(图
3) 。暗培养条件下的叶片逐渐发黄 ,失绿 ,只形成愈
伤组织 ,无再生植株。40 d 后观察统计发现幼叶比
老叶容易诱导出再生植株。叶片出芽率从高到低的
培养基是 M8 > M5 > M1 > M6 > M4 ,再生小植株生
长最好的是 M5 培养基。
在培养基中只附加 62BA ,当 62BA 浓度为 2. 0
mg· L - 1
时 ,诱导效果最好。3. 0 mg· L - 1
的 62BA 诱
导的芽比 1. 0 mg· L - 1
62BA 诱导的要快。62BA 为
5. 0 mg· L - 1
时叶片无不定芽的分化 ,只有大量愈伤
组织生成 ,且随着培养时间的延长愈伤组织可分化
出大量不定芽。另外 ,当 62BA 和 NAA 的浓度配比
是10∶ 1 ,但其绝对浓度不同时对叶片不定芽再生的
影响也是不同的 ......
薛建平1 ,2
, 王汝毅1
, 张爱民1
,柳 俊2
(1.淮北煤炭师范学院 生物系 ,安徽 淮北 235000 ;
2.华中农业大学 园艺林学学院 ,湖北 武汉 430070)
[摘要] 目的:研究地黄叶片器官发生的形态建成;建立诱导地黄叶片直接再生植株和试管小地黄的最佳培
养基和培养条件。方法:从无菌脱毒苗上采取不同位置的叶片 ,接种到附加不同激素的培养基中 ,诱导叶片直接再
生植株和试管地黄。结果与结论:MS + 62BA 2. 0 mg· L - 1
培养基最适合叶片再生植株。MS + 62BA 1. 0 mg· L - 1
+
NAA 0. 5 mg· L - 1
培养基适合诱导试管地黄。最佳培养条件是光照 12 h· d - 1
,光强 2 000~3 000 lx ,温度(25 ±1)
℃。
[关键词] 地黄;叶片;再生植株;试管地黄
[中图分类号] S 567 [文献标识码] A [文章编号] 100125302 (2003) 0120021204
地黄 Rehmannia gl ut inosa L.属玄参科多年生
草本植物 ,为大宗常用药材之一。目前 ,为解决地黄
的病毒病 ,人们主要利用茎尖脱毒培养技术生产脱
毒苗 ,但降低脱毒苗的生产成本已成为限制其应用
的瓶颈[1 ]。近年来 ,国内外以地黄叶片、块根为外
植体脱分化诱导生成愈伤组织 ,再分化成再生植
株[2 ]。但这一途径往往存在变异 ,因为在愈伤组织
长期培养中 ,常可见到细胞的染色体组发生变化 ,而
表现出遗传上的不稳定性[3 ,4 ]。若利用叶片直接再
生植株 ,不经过愈伤组织阶段 ,就能保持亲本的遗传
性状 ,而且叶片取材方便 ,来源广泛 ,均一性强。试
管地黄作为一种繁殖体 ,易运输、贮存 ,可望取代脱
毒苗 ,从而降低生产成本 ,实现地黄栽培的革命性变
化。为此我们开展了地黄叶片直接再生植株和试管
地黄的研究工作 ,国内外尚未见报道。
1 材料和方法
1. 1 材料
地黄栽培品种 “8525”,采自焦作市温县农科所 ,经本院生物系郭传友鉴定为玄参科植物地黄 R .
gl ut inosa 的新鲜块根。
1. 2 培养基及培养条件
以 MS为基本培养基 ,附加不同种类和浓度的
[收稿日期] 2002206221
[通讯作者] Tel . : (0561) 3802225 E2mail :xuejp2000 @yahoo.
com. cn
植物激素 ,3. 0 %的蔗糖 ,用 0. 7 %的琼脂固化 ,pH
5. 8~6. 0。叶片以叶背面接触培养基和以叶正面接
触培养基 ,再分别作 2 个处理:一是光照培养 ,温度
(25 ±1) ℃,光照 12 h· d - 1
,光强2 000~3 000 lx ;一
是暗培养 ,温度(25 ±1) ℃。
1. 3 无菌苗的获得
将田间挖取的地下块根洗净,流水冲2 h。在超
净工作台上 ,用 70 %酒精表面消毒 30 S ,然后用
12 %的双氧水和 0. 1 %的升汞混合液消毒 10 min ,再用无菌水冲洗 5~6 次。将带芽眼的部分切成小
块放入 1 2MS 基本培养基中 ,于光照培养箱中培
养 ,15 d后可长出小植株。
1. 4 苗的继代培养
待无菌苗长至 1~2 cm时 ,在超净工作台上 ,从
基部切下 ,转至 MS + 62BA 0. 5 mg· L - 1
+ NAA 0. 5
mg· L - 1
培养基 ,于光照培养箱中继代培养。
1. 5 叶片直接再生植株诱导培养
当继代培养的苗长至 3~4 cm 时 ,从苗顶端依
次向下 ,选择色浓绿、伸展的健壮叶片 ,自叶柄处完
整剪下 ,背接或正接到添加了不同种类和浓度植物
激素的培养基上 ,每瓶中再接一个剪成碎片的不完
整叶片作为对照。然后在光照培养箱和暗培养箱中
作对照培养。
1. 6 叶片试管地黄诱导培养
叶片取材同上 ,背接到添加了不同种类和浓度
植物激素的培养基上 ,在光照培养箱和暗培养箱中
· 12 ·
第28 卷第1 期
2003 年1 月 中 国 中 药 杂 志
China Journal of Chinese Materia Medica
Vol . 28 ,No. 1
Jannuary ,2003
? 1995-2005 Tsinghua Tongfang Optical Disc Co., Ltd. All rights reserved.作对照培养。
2 结果
2. 1 叶片直接再生植株
2. 1. 1 激素种类和浓度 将在 M1 培养基中继代
植株的叶片以背面接触培养基 ,培养基中添加不同
种类和浓度的激素(表 1) 。在光照条件下 ,接种 7 d
后 ,叶龄较高的叶片边缘向叶背面卷曲 ,叶柄稍有膨
大 ,呈淡黄色;叶龄较低的叶片整个膨大、伸展。15
d后在 M5 和 M8 中叶片靠叶柄基部有芽出现 ,M5
中叶片的叶柄处愈伤组织生长慢 ,继续培养 ,苗生长
良好 ,每个叶片有 5~6 个不定芽(图 1) ,而 M8 中叶
片随培养时间延长 ,苗停止生长 ,且叶柄部愈伤组织
生长旺盛。20 d后 M1 ,M6 中叶片近基端都开始有
芽的分化 ,继续培养 , 30 d 后 ,M6 中变化不大 ,而
M1 叶片的远基端也开始有芽的分化 ,同时叶脉中部
有2~4 个彭大良好的试管地黄(图 2) 。25 d 时在
M4上叶脉个别地方有芽的分化 ,且生长缓慢。在
M7 中 ,叶片大量愈伤化 ,无芽的分化。剪成碎片的
叶片只在伤口处形成愈伤组织 ,无不定芽的形成(图
3) 。暗培养条件下的叶片逐渐发黄 ,失绿 ,只形成愈
伤组织 ,无再生植株。40 d 后观察统计发现幼叶比
老叶容易诱导出再生植株。叶片出芽率从高到低的
培养基是 M8 > M5 > M1 > M6 > M4 ,再生小植株生
长最好的是 M5 培养基。
在培养基中只附加 62BA ,当 62BA 浓度为 2. 0
mg· L - 1
时 ,诱导效果最好。3. 0 mg· L - 1
的 62BA 诱
导的芽比 1. 0 mg· L - 1
62BA 诱导的要快。62BA 为
5. 0 mg· L - 1
时叶片无不定芽的分化 ,只有大量愈伤
组织生成 ,且随着培养时间的延长愈伤组织可分化
出大量不定芽。另外 ,当 62BA 和 NAA 的浓度配比
是10∶ 1 ,但其绝对浓度不同时对叶片不定芽再生的
影响也是不同的 ......
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