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编号:10235119
干细胞因子基因5′旁侧1.42 kb调控序列的PCR扩增
http://www.100md.com 《广东医学院学报》 2000年第2期
     作者:谭运年 谭文斌 彭兴华

    单位:谭运年(广东医学院附院妇产科研究室,湛江 524001);谭文斌(湖南医科大学分子生物学研究中心,长沙 410078);彭兴华(湖南医科大学分子生物学研究中心,长沙 410078)

    关键词:干细胞因子;调控序列,核酸;聚合酶链反应

    广东医学院学报000201 摘要 目的:通过PCR扩增从基因组中获得长达1.42 kb人干细胞因子基因(SCF)5’旁侧调控序列,为后续表达调控研究做准备。方法:对常规PCR缓冲液调节pH值至9.0,Taq DNA聚合酶中加入适量的具有校正功能的TliDNA聚合酶,退火温度升至68℃,加大模板量,增加模板预变性时间,进行25个循环。结果:经过改变条件,成功地获得了所需的1.42 kb的SCF调控序列片段。结论:在一般的PCR体系中添加适量的具有3’→5’外切核酸酶活性和校正功能的TliDNA聚合酶扩增稍长DNA片段是经济可行的。
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    【中图分类号】 Q 523 【文献标识码】 A

    文章编号:1005-4057 (2000) 02-0119-03

    Amplification of the 1.42 kb 5’ flanking regulation of the stem ce ll factor

    gene using polymerase chain react ion

    Tan Yunnian,Tan Wenbin,Pen X inhua

    (Research Department of Obstetrics a nd Gynecology,Affiliated Hospital of Guangdong Medical College,Zhanjiang 524001)
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    Abstract Objective To prepare fo r the following regulation and expressio n study of the SCF gene,a 1.42 kb 5’ flanking regulation sequence was amp lified.Methods:Normal po lymerase chain reaction (PCR) buffer pH was adju sted to 9.0,some Tli DNA polymerases which has proofreading function wer e added,annealing temperature rise t o 68℃,the amount of the genomic DNA template increased,then run 25 PCR cycles. Results:SCF 5’ f lanking regulation sequence was successf ully amp lified.Conclusion:It is a economical and effective way to amplif y longer DNA fragment after some enzymes which has 3’→5’ exonuclease activity an d proofreading function were added t o the normal PCR system.
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    Key Words stem cell fact or;regula tion sequence;polymerase chain reaction

    在造血环境中干细胞因子 (SCF) 是维持其微环境,造血干细胞 的 增殖,分化的因子,SCF在生殖细胞的增殖,分化方面均起着主要作用[1]。 SC F基因的突变是否导致不孕尚未清楚[2]。对于 SCF表达调控的研究,仅在 1996年人的 SCF的5’旁侧基因序列通过筛选基因组粘粒文库的方法得到 后才开始的,要构建带有长片段的 SCF的旁侧调控序列与 SCF全长 cD NA的融合克隆载体,首先,必需得到足够长的5’调控序列,然而一般的 PC R难以得到,我们通过一些 PCR条件的改进,成功地从人基因组 DNA中得 到了长达1.42 kb的人 SCF5’旁侧调控序列。

    1 材料与方法

    1.1材料
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    1.1.1 健康成人血 取自湘雅医院中心血库。

    1.1.2 试剂与酶 dNTP,PCR buffer(pH 9.0 25℃), TaqDNA 聚合酶购自上海生工公司。琼脂糖,TliDNA聚合酶,λDN A/EcoR Ⅰ+HindⅢ Markers,Φ X174 DNA/H aeⅢ Markers 购自上海普洛麦格公司,其余均为国产分析纯试剂。

    1.1.3 引物设计 引物从计算机软件上设计,上海生工合成。上游引物序列 5’CCGCTCGAGAAACGCACCGGAACTAAT TAAAGC 3’,人工设计带有一Xho Ⅰ限制性内切酶位点和三个保护性碱基 ,下游引物序 列5’ CCAAACCCACCCCTCCATCC 3’下游引物位置紧靠第一 外显子。

    1.2 方法

    1.2.1 人基因组 DNA的提取与纯化[3] 取0.3 mL 用枸橼酸钠 抗疑全血于 1.5 mL Eppendorf管中,加入1 mL STMT(8 0g/L蔗糖,10 mmol/L Tris-HCL pH 8.0,0.5 mm ol/L MgCl2,1%TritonX-100),充分混匀,使其溶血, 12 000r/min 2min,弃上清,沉淀加 0.4 mL 154 mmol/ L NaCl洗涤一次后加入 460 μL NE 溶液 (50 mmol/L NaCl,25 mmol/L EDTANa2,pH 8.0),用吸管将沉淀 吹散,加入 30 μL 100g/L SDS,迅速混匀;再加入 50 μ L 20g/L 蛋白酶K,50℃水浴 2 h,再依次用苯酚,苯酚/氯仿,氯 仿抽提,上清加入1/10水相体积的 3 mmol/L NaAC(pH 5.2) 和2.5倍无水乙醇,混匀,置-70℃冰箱 30 min,12000 r/mi n,5 min,弃上清,沉淀用体积分数为0.7的乙醇洗一次,12000 r/ min,1 min,倒去上清,真空干燥,沉淀加入 50 μL 双蒸水溶解,储 存于-20℃备用。
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    1.2.2 1.42 kb SCF 5’旁侧序列的 PCR扩增 50 μL扩 增体系中含 1.0μg 人基因组 DNA,50 mmol/L KCl,10 mmol/L Tris-HCl(pH 9.0),0.1% Triton X -100,0.2 mmol/L dNTPs,1.2 mmol/LMgCl2 ,扩增调控序列引物各 10p mol,向 Taq DNA 聚合酶 200 U加入 6 U Tli DNA 聚合酶后混匀,从中取相当于 Taq DNA 聚合酶 2.5 U的混合酶加入反应体系,按 95℃ 预变性 5 min,94℃ 50 s,68℃ 1 min,72℃ 2 min程序循环 25次,然后 72℃延伸 10 min。

    1.2.3 琼脂糖凝胶电泳 取 PCR 产物5 μL 在1%琼脂糖凝胶电泳, 点 λ DNA/EcoR Ⅰ+Hind Ⅲ Markers 和 ф X 174 DNA/HaeⅢ Markers 做标准,5v/cm 30 min.
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    2 结果

    如图1所示,2 号泳道介于λ DNA/EcoR Ⅰ+ Hind Ⅲ Markers 1 584 bp 与1 375 bp 片段之间,紧靠ф X 174 DNA/Hae Ⅲ Markers最大片段 1 353 bp 处见一明显条带, 3 号泳道扩增条件同 2号但没加 TliDNA 聚合酶,4 号泳道为本 试验随后 RT-PCR扩增的1.2 kb的 SCF 全长 cDNA。

    1 λ DNA/EcoR Ⅰ+Hind Ⅲ分子量标 记

    2 加Tli DNA 聚合酶 PCR产物

    3 没加 Tli DNA 聚合酶 PCR 产物

    4 RT-PCR c DNA产物
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    5 ф X 174 DNA/HaeⅢ分子量标记

    图1 PCR产物1%琼脂糖胶上电泳结果

    3 讨论

    从 1985年 Mullis 发明 PCR 技术已来,迄今已有十几年的时 间,各种 PCR技术的发明日新月异,尽管如此,在目前的临床基因诊断与基因 结构研究中。PCR扩增的片段大部分局限在 1 kb以下,如临床上各型病毒性 肝炎、解脲支原体、沙眼衣原体及其它致病性微生物的诊断等等,大部分扩增片段 均在 600 bp以下,点突变的 SSCP 检测技术更要求在 200 bp以 下最好。在基因结构研究中,由于 Taq DNA 聚合酶本身不具有3’→5’ 外切核酸酶活性的缺限,使得它的应用受到一定的局限,随着具有3’→5外切核 酸酶的发现与使用,逐步使得大片段的 DNA 的扩增得以实现和应用。

    TaqDNA 聚合酶可扩增至 2 kb的 DNA片段,但尽管如此,对于从复 杂基因组中扩增却并非易事,当前利用 PCR 扩增 DNA大片段大多局限于 3~4 kb,尽管已有一些扩增大的 PCR产物报道[4],但对最佳条件所做 系统研究不多,尤其是从复杂基因组中扩增。国外虽有一些公司有专门试剂出售, 但价格高昂,国内经费难以承受得起,有时能够通过一些改良的办法达到试验目的, 也没有必要去购买这些专门的试剂。
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    目前对于 TaqDNA聚合酶难以扩增大片段的缘由认为,其主要一个原因于 TaqDNA 聚合酶缺乏3’→5’外切核酸酶活性,错配的碱基阻止了链的延 伸反应,扩增片段越大,错配机会越多,产率将越低,甚至于无产物。但如果在此 反应体系中加入适量具有校正功能的酶,利用其3’→5’外切核酸酶活性,切除 这种错配形式的碱基,使得链的延伸反应得以继续。此方式除促进 PCR成功外, 此酶的外切核酸酶活性还可减少错配。据文献报道[4],此种酶的加入可比单用 TaqDNA 聚合酶所得产物的正确性至少高 10倍。目前已有多家公司生 产这种性质的酶,如 Tli,Deep vent,pfu,pwo等。另外, 在 pH值选择方面,有文献报道[4,5]PCR反应过程中,低 pH值可促使 DNA脱嘌呤,使链反应中止,而适度提高 pH值,阻止 DNA脱嘌呤,可 使链反应继续。

    本文依上述各点,应用 pH 9.0(25℃)反应体系,添加少量 TliDN A聚合酶,Taq∶Tli为33∶1单位比。在退火温度方面,本文从55~7 2℃均做了比较,结果发现从 55℃开始至 62℃,在琼脂糖胶上预定的扩增 的区带呈抹片形式,至 65℃有较明显的非特异性区带,至 68℃扩增效果好, 为单一非特异性区带,68℃ 以上非特异性条带多,与文献报道一致[5],退 火温度如此之高,究其原因可能与模板变性有关,这亦是反应开始增加模板预变性 时间的原因,其它原因仍然不清楚。
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    PCR应用具有校正功能的 DNA聚合酶是 PCR技术发展的一大趋势,它 的应用不但能促使PCR的成功,提高产量,且能提高产物的特异性,对于后续 正确克隆的筛选等分子生物学操作相当有益。在目前这些酶还未普及的情况下,本 文的方法在一般的 PCR 体系中添加适量的具有校正功能的 DNA 聚合酶 扩增稍长DNA片段证明是非常经济有效的。

    基金项目:国家自然科学基金项目资助(NO.39700050)

    作者简介:谭运年,男,1968年7月出生,医学硕士,助教

    参考文献

    [1] Anderson DM,Lyman SD,Baird A,e t al.Molecular cloning of mast cell gr owth factor,a hematopoietin that is active in both membrane bound and so luble forms.Cell,1990,63:235~243
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    [2] Bedell MA,Brannan CI,Evans EP,et al.DNA rearrangements located over 100 kb 5’ of the steel(sl)-coding reg ion in steel-panda and steel-contras ted mice deregulate SL expression an d cause female sterility by disrupti ng ovarian follicle development.Gene s Dev,1995,9:455~470

    [3] 卢圣栋主编.现代分子生物学实验技术.北京:高等教育出版社,199 3.103~104

    [4] Cheng S,Fockler C,Barnes WM,et al.Effective amplification of long t argets from cloned inserts and human genomic DNA.Proc Natl Acad Sci USA, 1994,91:5695~5699

    [5] Barnes WM.PCR anplification of u p to 35-kb DNA with high fidelity an d high yield from Lamda bacteriophag e templates.Proc Natl Acad Sci USA,1 994,91:2216~2220

    收稿日期:1999-09-18;修订日期:1999-12-26, 百拇医药