败血症大鼠肝细胞内核膜三磷酸肌醇受体的改变
作者:郝胜利 杨 军 张孙曦 庞永政 苏静怡 唐朝枢
单位:郝胜利 张孙曦 北京医科大学生物物理系,北京 100083;庞永政 苏静怡 唐朝枢 杨 军 第一医院心血管研究所
关键词:败血病;肝;细胞核;肌醇1,4,5-三磷酸;受体
北京医科大学学报990406 摘 要 目的:观察早期、晚期败血症大鼠肝细胞内核膜上1,4,5-三磷酸肌醇受体(inositol 1,4,5-triphosphate receptors, IP3R)的变化。方法:通过结扎并穿刺盲肠制作大鼠败血症模型,差速离心分离内核膜,[3H]IP3放射配体分析肝内核膜IP3R与其配体的最大结合容量(Bmax)及亲和力(Kd)。45Ca2+转运测定内核膜IP3R释放Ca2+功能。结果:早期和晚期败血症Bmax分别增加14%(P<0.05)和91%(P<0.01)。但Kd值无明显变化(P>0.05)。IP3引起45Ca2+转运在败血症时也相应增加。结论:在败血症时肝细胞核被膜IP3R发生上调,其释放Ca2+的能力增强, 但结构可能未发生变化。
中国图书资料分类法分类号 R631.3-332
Changes of inositol 1,4,5-triphosphate receptors
in inner nuclear membrane of rat liver during sepsis
HAO Sheng-Li#, YANG Jun, ZHANG Sun-Xi, PANG Yong-Zheng, SU Jing-Yi, TANG Chao-Shu
(#Department of Biophysics, Beijing Medical University, Beijing 100083)
ABSTRACT Objective: To investigate the changes of inositol triphosphate receptors in the inner nuclear membrane of rat liver during sepsis. Methods: Septic rat model was prepared by cecal ligation and puncture (LCP). The binding site density (Bmax) and affinity (Kd) of IP3 to the inner nuclear membrane were measured by [3H]IP3 binding assay. The function of IP3 receptors to release Ca2+ was assessed by 45Ca2+ movement to the inner nuclear membrane vesicle upon the action of IP3. Results: Bmax was increased by 14% (P<0.05) during early sepsis and by 91% (P<0.01) during late sepsis while no alterations of the affinity of IP3R to its ligand was shown during sepsis. 45Ca2+ movement to the inner nuclear membrane vesicle was also increased accordingly during sepsis. Conclusion: Binding site density and the function of IP3R in the inner nuclear membrane were progressively increased during sepsis, while there might be no change in the structure.
MeSH Septicemia Liver Cell nucleus Inositol 1,4,5-triphosphate Receptors
败血症及继发的多器官功能衰竭是感染性死亡的常见原因[1]。由于败血症的发病机制迄今尚未完全阐明,尽管目前医疗手段不断提高,病死率仍呈上升趋势[1]。现已发现参与败血症的体液因子很多[1],研究这些因子在细胞水平上的相互作用是阐明败血症的关键。其中细胞核内Ca2+信号变化尤其值得关注。Ca2+是调节细胞功能代谢的重要信使物质,近来发现Ca2+不仅为胞浆信使,还是核内信使,参与调控细胞分裂、分化、凋亡、基因转录等核内重要过程[2]。核存在一整套Ca2+信号产生系统[2]:内、外两层核膜形成的腔(即内核膜腔)贮有大量的钙亦为一钙库,Ca2+-ATPase,和1,3,4,5-四磷酸肌醇受体(IP4R)是核Ca2+ 摄取系统,分布于外层核膜上。1,4,5-三磷酸肌醇(inositol 1,4,5 triphosphate, IP3) 受体(IP3 receptor, IP3R)和ryanodine受体(ryanodine receptor, RyR)是核Ca2+释放系统,分布在内核膜上,它们本身即为Ca2+通道, 分别在IP3和环腺苷二磷酸核糖(cyclic ADP ribose, cADPr)作用下,将核被膜腔内贮存的Ca2+释入核浆。核Ca2+摄取和释放系统精确地调控核内[Ca2+]变化,进而影响核的各种功能[2]。本室曾报道败血症大鼠肝细胞核Ca2+泵功能的改变[3],在此基础上本实验观察败血症大鼠肝细胞核内核膜IP3R的变化。以探讨败血症时造成核Ca2+信号改变的机制。
1 材料与方法
1.1 大鼠败血症模型的制作[4]
雄性SD大鼠200~250 g(北京医科大学实验动物中心提供),术前禁食8 h,自由饮水,异戊巴比妥钠(每1千克体重60 mg, i.p.)麻醉下,开腹,3-0号线结扎盲肠并用18号针头穿刺两孔,分层缝合腹壁。术后皮下注射生理盐水(每1千克体重40 ml)。术后9,18 h分别为早期败血症和晚期败血症。
1.2 肝细胞核内核膜的提纯[5]
所有操作在0~4℃下进行。用50 ml冰冷TKM液(mmol.L-1:Tris/HCl 50, KCl 25, MgCl2 5; pH 7.5)从门静脉原位灌洗肝,取肝剪碎置于40 ml匀浆液(含0.25 mol.L-1蔗糖, 1.0 mmol.L-1 EGTA 的TKM液)中,匀浆,纱布过滤, 离心(2 250 r.min-1, 10 min), 弃上清,将沉淀加6 ml匀浆液,12 ml含2.3 mol.L-1蔗糖的TKM液混匀, 装入离心管,下铺6 ml含2.3 mol.L-1蔗糖的TKM液。再离心(27 000 r.min-1, 30 min), 沉淀即为核。 核用缓冲液A(含0.25 mol.L-1蔗糖,10 mmol.L-1 MgCl2,1 mmol.L-1 DTT1, 10 mg.L-1 leupeptin, 2 mmol.L-1 PMSF2, 50 mmol.L-1 Tris- HCl, pH 7.4)重悬, 加入10 g.L-1柠檬酸钠, 冰浴30 min并轻轻搅拌,离心(500 r.min-1, 15 min),去外膜核沉于管底。再用缓冲液A重悬沉淀,使核浓度为5 g.L-1,加入DNase I (250 mg.L-1), 在4℃消化14 h, 进行蔗糖密度梯度(0.25、1.6、2.4 mol.L-1)离心(27 000 r.min-1, 2 h), 内核膜位于0.25/1.60 mol.L-1蔗糖溶液界面。考马斯亮蓝法定量蛋白。按文献[6]方法测定标志酶活性:NAD焦磷酸化酶,NADPH细胞色素C还原酶。
1.3 [3H]IP3结合测定[5]
内核膜用含50 mmol.L-1 Tris-HCl,pH 8.0,2 mmol.L-1 EDTA悬浮,进行[3H] IP3结合反应,分别加浓度递增的[3H] IP3(0.05~1.5 nmol.L-1), 反应体积400 μl,加入核0.1 mg蛋白/管 ,0℃下反应10 min。 结合与游离的放射性配体([3H]IP3)用离心法(12 000 r.min-1, 5 min)分离,上清抽吸去除,沉淀加1 ml 组织溶解液(Soluene 350, Packard)、乙酸70 μl,转至液闪杯中,用液闪仪测定[3H] IP3放射活性。 非特异结合通过加10 μmol.L-1 IP3测定。由Scatchard分析得到Kd, Bmax值。
1.4 45Ca2+ 转运测定[5]
内核膜置于缓冲液B( mmol.L-1, 250蔗糖,2 EGTA, 2 EDTA, 4 K2HPO4, 4 MgCl2, 50 Tris-HCl, pH 8.0 ),并含2.08 mmol.L-1 CaCl2 (游离[Ca2+] 为1 μmol.L-1)。 加入7.4×104 Bq.ml-1 45Ca2+ (Amersham公司), 实验分两组, 一组加5 μmol.L-1 IP3,另一组加2 μmol.L-1离子霉素(ionomycin), 37℃反应并计时, 按不同时间点通过真空抽滤中止反应,内核膜被截留在GF/ B (whatman) 玻璃纤维膜。用3 ml冰冷的缓冲液B快速冲洗纤维膜, 后将其置于液闪杯中,干燥后在液闪仪测定45Ca2+放射活性。转运的45Ca2+ 量由给定时间点放射性减去开始的放射性求得。
1.5 数据处理
实验数据均以
2 结果
2.1 肝细胞核及内层核膜的鉴定
NAD焦磷酸酶是细胞核的标志酶[5],内层核膜上的活性约为匀浆的21倍[每分每毫克蛋白(78.26±5.44) vs (3.68±0.27) nmol]。而微粒体的标志酶NADPH细胞色素C还原酶,在内层核膜只有匀浆的1/8[每分每毫克蛋白(1.27±0.11) vs(10.27±0.87) nmol]。表明得到的核及内层核膜纯度高、污染小。上述标识酶在败血症组与对照组之间相近, 差别无统计学意义(P>0.05)。
2.2 [3H] IP3 与内核被膜上IP3R的结合
本实验置内核膜于低渗缓冲液,使其破碎成小片, 进行[3H] IP3 结合实验. 结果显示IP3与内核膜结合的最大容量Bmax在早期败血症组比对照组增加14.2%[每毫克蛋白(2 629±221) vs (2 302±186) fmol, P<0.05]。晚期败血症时Bmax进一步升高,为每毫克蛋白4408±286 fmol,是对照组的1.91倍(P<0.01 ), 亦比早期败血症组增加了 17% (P<0.01)。IP3 与内核膜上IP3R的亲和力在早期败血症时无变化(3组Kd分别为:nmol.L-1,对照组1.18±0.20;早期组1.16±0.22;晚期组1.38±0.24,各组间P>0.05,见图1A,1B)。
2.3 IP3 诱发的45Ca2+向内核膜囊泡中的转运
内核膜在等渗液中自发形成内面朝里的囊泡[5](vesicle)。加入5 μmol.L-1 IP3发现45Ca2+转入内核膜囊泡的量随时间呈先升后降的双相变化(见图2A)。早期败血症组, 各时间点45Ca2+转运的量均高于对照; 晚期败血症组45Ca2+转运量进一步增加,当以2 μmol.L-1离子霉素代替IP3时,发现Ca2+进入囊泡的量约为这一作用的2~5倍,其中峰值(30S时)差别最大。败血症过程引起的Ca2+转运量也呈进行性增加(见图2B)。
图1 [3H]IP3与败血症大鼠肝细胞内层核膜结合的饱和曲线(A)
及Scatchard曲线(B),
分别表示对照组、早期和晚期败血症组(下同)
Figure 1 Saturation curve (A) and Scatchard plot (B) of [3H]IP3
binding to liver inner nuclear membrane from septic rat,
3 讨论
本实验发现败血症不同时期IP3与内膜结合的最大容量(Bmax)呈进行性增加,表明IP3受体数量增加,而且在晚期比早期增加更为显著。IP3和IP3R的亲合力在败血症时变化不显著,表明IP3R结构可能未发生变化。败血症时IP3诱发45Ca2+进入内核膜囊泡的量高于对照,表明核IP3R释放Ca2+功能在败血症时呈进行性增强,与 IP3R数量的增加一致。造成IP3R上调的机制尚待进一步研究。
图2 5 μmol.L-1 IP3 (A) 及2 μmol/L离子霉素 (B) 作用下45Ca2+
向内核膜囊泡转运的时间关系曲线,
Figure 2 45Ca2+ transport to the inner nuclear membrane vesicle acted
by 5 μmol.L-1 IP3 (A) or 2 μmol.L-1 ionomycin (B),
# P<0.05, ## P<0.01 (vs ES)
IP3R数目的变化可能会影响到核内Ca2+信号的幅度及频率,近来发现在肝细胞胞浆Ca2+信号频率和幅度与内质网上的IP3R数目、分布及功能直接相关[7], 推测核Ca2+信号也与核被膜上IP3R有关。Ca2+信号频率和幅度的差异是Ca2+特异调控细胞内不同生理过程的内在机制[6]。肝是体内代谢及防御的重要器官,在败血症的发生发展过程中起重要作用[8]。在早期败血症时肝细胞蛋白表达迅速发生改变[8],表明核功能发生了改变(如基因转录等)。本实验发现IP3R在早期败血症时受体上调可能是造成这些改变的重要原因; 晚期败血症时IP3R受体进一步上调,向核浆内释放Ca2+能力增加,核内可能出现Ca2+超载,这些变化可能是晚期时肝细胞蛋白合成减少,细胞发生凋亡,进而导致肝功能衰竭的一个机制[8]。
参考文献
1 Bone RC, Grodzin CJ, Balk RA. Sepsis: a new hypothesis for pathogenesis of the disease process, Chest, 1997, 112: 235-243
2 Santella L, Carafoli E. Calcium signalling in the nucleus. FASEB J, 1997, 11: 1091-1109
3 王培勇,叶 赤,庞永政,等.败血症大鼠肝细胞核Ca2+ 转运功能的改变. 生理学报,1997,49:191-196
4 Wichterman KA, Baue AE, Chaudry IH. Sepsis and septic shock: a review of laboratory models and a proposal. J Surg Res, 1980, 29: 189-201
5. Humbert JP, Matter N, Artault JC, et al. Inositol 1,4,5-triphosphate receptor is located to the inner nuclear membrane vindicating regulation of nuclear calcium signalling by inositol 1,4,5-triphosphate. J Biol Chem, 1996, 271: 478-485
6 Dolmetsch RE, Lewis RS, Goodnow CC, et al. Differentisl activation of transcription factors induced by Ca2+ response amplitude and duration. Nature, 1997, 368: 855-858
7 Joseph SK. Making waves: regulation of inositol triphosphate receptors and propagation of calcium signals in the liver, Hepatology, 1997, 26: 799-801
8 Biolo G, Toigo G, Cioocchi B, et al. Metabolic response to injury and sepsis: change in protein metabolism. Nutrition, 1997, 13: 52S-57S
(1998-07-20收稿)
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