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编号:13203643
转基因动物模型制作进展(2)
http://www.100md.com 2018年1月8日 医学信息 2018年第1期
     显微注射DNA的方法目前应用较多,是实验室真正成熟并可以稳定生产转基因动物的有效方法。但在其制作过程中仍涉及复杂的操作过程[7]。首先,在制作过程中要注意掌握母畜的性周期,使母畜在预先设定的时间内排卵,以保证获得大量刚刚受精的单细胞胚胎。其次,此种方法制作的转基因动物只能约占子代中的1%~3%,效率较低,但是结果相当稳定,并且成本较低,是目前实验室常用的一种值得推荐的方法[8]。

    2精子导入法

    利用雄性精子作为外源性基因,借助受精作用把外源基因导入受精卵,整合到受精卵的基因组中的方法称为精子导入法,是制作转基因动物的一种新的方法。此方法把精子作适当处理后,使其具有携带外源基因的能力,然后用携带有外源基因的精子给母畜受精,在母畜的后代中就会产生一定比例的动物是整合了外源基因的动物。该法简单、方便。与显微注射法,其成本较低,同时不涉及对动物进行手术处理,因此其操作相对简单[9-10]。但在实践过程中仍然发现这种方法成功率较低,而且对于精子是否可作为外源DNA载体也存在争论。因此目前这项技术仍处在早期探索阶段,仍需进一步实验室研究。应用此种方法可以将人工授精、体外受精与转基因结合起来。
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    3胚胎干细胞法

    胚胎干细胞(ES细胞)是指从囊胚期的内细胞团中分离出来的尚未分化的胚胎细胞,将其进行体外培养,扩增、转化和制作遗传突变型等遗传操作。本法以整合有外源基因的ES细胞作为供体细胞,将注射过的胚胎经培养后筛选无发育缺陷的囊胚,移植到交配第3 d的假孕受体动物子宫内,培育出转基因动物。这种办法外源基因整合率较高,但是不易建立ES细胞系。并且在实验过程中要通过嵌合体途径,因此实验周期比较长[11-12]。胚胎干细胞法外源基因的整合率较高,實验者可以在植入囊胚前选择合适转化的ES细胞,避免了以前只能在子代筛选的缺点,并能充分利用分子生物学发展起来的各种先进方法,是一种目前实验室很有前途的技术。但是它同样存在缺点,比如不易建立ES细胞系。并且由于通过嵌合体途径,所以实验周期长。但是,仍是目前实验室较有前景的一种转基因动物模型制作方法。

    4反转录病毒法

    反转录病毒具有侵入宿主细胞并整合于细胞的染色体DNA的能力。将外源基因DNA插入反转录病毒载体,通过辅助细胞包装成高感染度的病毒颗粒,感染胚胎后,将感染的桑椹期胚胎细胞导入子宫,可发育成携带外源基因的子代动物[13]。
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    该法整合率较高,目的基因不易破坏,多是单拷贝、单位点整合,适合于难以观察到原核的禽类受精卵。由于病毒衣壳大小的限制,目的基因不宜超过10 kb,否则影响活性和稳定。此外,病毒DNA可能影响外源基因在宿主动物的表达[14]。

    5电脉冲法

    电脉冲法(electroporation)又称电穿孔法,是将供体DNA与受体细胞充分混匀,在外界的高电压短脉冲下改变细胞膜结构,使细胞膜产生瞬间可逆性电穿孔,从而使一定大小的DNA可以通过细胞膜进入细胞,运送到细胞核。目前在动物中电脉冲法主要用来转化胚胎干细胞[15]。

    以上方法是目前实验室制作转基因动物模型常用的几种方法,各自有其优缺点,适用于不同的转基因模型制作过程。我们以显微注射法为例,简述转基因细胞的制作过程。用显微注射法制作的第一代子鼠为嵌合体子鼠,因此并非子鼠全部细胞中均有导入的外源基因,为了得到纯合子的转基因小鼠,还需用产生的雄性小鼠与提供囊胚的雌性小鼠交配,也称作回交[16]。回交后产生的子代小鼠有两种,野生型与杂合体。将杂合体小鼠互交后产生的子代鼠中会有野生型,杂合体和纯合体三种,通过PCR的方法可以将纯合体挑选出来,再进行繁殖,这样就能够得到稳定的转基因小鼠品系[17-18]。
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    转基因动物技术是上世纪八十年代发展起来的一种高新生物技术,近年来得到了飞速发展,转基因动物在生命科学研究中的重要性也越来越受到人们的重视。转基因动物技术的核心,是把遗传的功能单位─基因转移到动物体内,使它成为动物体内的一部分。被转移的基因可以来自同种或异种动物,也可以来自植物或微生物[19]。这样一来,就打破了物种之间的界线,也可以说动物能与植物、微生物杂交了。目前,转基因动物模型大部分局限于单个基因的转移,随着科学技术的发展,我们预料未来会出现多个基因的同时转移,那么转基因动物模型的应用范围又将极大扩展。在转基因动物方面,我国也取得了许多优秀的成果,目前已获得了转基因鱼、兔、鸡等多种转基因动物[20-21]。虽然目前围绕转基因技术的应用仍然存在一些争论,但是我们认为随着科学技术的进一步发展,转基因技术必将拥有更为广泛的应用前景。

    参考文献:

    [1]刘红林.转基因动物制备技术[J].中国猪业,2016,11(4):60-61.
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    [2]张赟,周国丽,杨冉,等.高G-C含量突变型Foxo1转基因动物基因型鉴定PCR方法的建立[J].河南科学,2017,35(2):204-208.

    [3]Jolivet G,Braud S,Dasilva B,et al.Induction of body weight loss through RNAi-knockdown of APOBEC1 gene expression in transgenic rabbits.[J].Plos One,2014,9(9):e106655.

    [4]陈宇浩,马达灵,贺番,等.病毒载体及其在转基因动物中的应用[J].探索科学,2016(9):379.

    [5]余科科,汪思应.转基因小鼠在生命科学中的研究进展[J].医学综述,2015,21(1):23-24.

    [6]董贤慧,高维娟,贺小平,等.淫羊藿、黄芪、葛根有效组分复方对阿尔茨海默病转基因模型小鼠大脑皮质DM T1表达的影响[J].重庆医学,2016,45(16):2176-2179., http://www.100md.com(孙甫 杨姣 吴文焕 王磊 田宇)
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