丁酸钠诱导HepG2细胞凋亡机制的研究(2)
1.5 RT-PCR检测hTERTmRNA表达：(1)总RNA提取：使用总RNA抽提试剂盒，按试剂说明书进行操作；(2)逆转录成cDNA(RT)：取总RNA 2 μl(1 μg)进行逆转录反应合成cDNA；(3)PCR反应：cDNA 10 μl，进行PCR循环反应：94℃ 45s、52℃ 45s、 72℃ 45s，共35个循环，最后72℃延伸5分钟。hTERT引物 sense: 5'-GAAGAGTGTCTGGAGCAAGTTGCA-3'，antisense:5'-TCCACCTTGACAAAGTACAGCTCAG-3'，分子量405 bp；(4)PCR产物分析：PCR产物于2%琼脂糖凝胶电泳，EB染色20分钟，Tanon GIS凝胶成像系统进行密度指数(densitometry index)分析[2]。β‐actin RT-PCR扩增为内参照，分子量230 bp，以不加模板总 RNA 的RT-PCR为阳性对照。hTERT mRNA相对表达量的测定：以各hTERT电泳条带密度指数与相对的内参照密度指数之比来表示。
1.6 统计学分析：数据以均数±标准差(x±s)表示，采用SPSS11.5统计软件分析，应用t检验、χ2检验、方差分析检验各组数据间的差异。
2 结果
2.1 丁酸钠对HepG2细胞增殖的影响：丁酸钠与HepG2细胞共同培养24、48小时，对照组与实验组比较差异无显著性(P>0.05)。丁酸钠与HepG2细胞共同培养72小时，对照组与实验组比较差异有显著性(P
2.3 丁酸钠对HepG2细胞端粒酶活性的影响：检测发现，对照组HepG2细胞端粒酶活性为(3.58±0.33)，经丁酸钠处理后，端粒酶活性下降为(1.16±0.12)，两组间比较差异有显著性意义(P, 百拇医药(胡孝乾)
1.6 统计学分析：数据以均数±标准差(x±s)表示，采用SPSS11.5统计软件分析，应用t检验、χ2检验、方差分析检验各组数据间的差异。
2 结果
2.1 丁酸钠对HepG2细胞增殖的影响：丁酸钠与HepG2细胞共同培养24、48小时，对照组与实验组比较差异无显著性(P>0.05)。丁酸钠与HepG2细胞共同培养72小时，对照组与实验组比较差异有显著性(P
2.3 丁酸钠对HepG2细胞端粒酶活性的影响：检测发现，对照组HepG2细胞端粒酶活性为(3.58±0.33)，经丁酸钠处理后，端粒酶活性下降为(1.16±0.12)，两组间比较差异有显著性意义(P, 百拇医药(胡孝乾)