1型糖尿病小鼠骨髓EPCs的培养和功能研究(2)
1.2.5 EPCs小管的形成 将Matrigel胶4℃过夜冻融，在层流超净台上，Matrigel包被48孔培养板，并放置 37℃，5% CO2环境下聚合30 min。用0.25%胰酶(含0.02% EDTA)消化并收集贴壁细胞，每孔加入500 μL细胞悬液，37℃，5% CO2培养箱培养16 h。显微镜下观察管腔样结构并拍照，计数高倍镜下5个视野的管腔长度，实验重复3次，取均值。
1.2.6 EPCs的迁移 取培养7 d的小鼠骨髓EPCs，用0.25%胰酶(含0.02%EDTA)消化并收集细胞。将100 μL细胞悬液缓慢加入Transwell小室的上室。将下室加入500 μL含10%胎牛血清的1640培养基。置于CO2培养箱中培养16 h，检测时移去上室培养液，100%甲醇固定，2.5 g/L结晶紫置于37℃暖箱染色30 min，显微镜下观察并拍照，计数高倍镜下5个视野的迁移细胞数，实验重复3次，取均值。
1.3 统计学方法
采用SPSS 10.0统计学软件进行数据分析，计量资料数据用均数±标准差(x±s)表示 ......
您现在查看是摘要页，全文长 4325 字符。
1.2.6 EPCs的迁移 取培养7 d的小鼠骨髓EPCs，用0.25%胰酶(含0.02%EDTA)消化并收集细胞。将100 μL细胞悬液缓慢加入Transwell小室的上室。将下室加入500 μL含10%胎牛血清的1640培养基。置于CO2培养箱中培养16 h，检测时移去上室培养液，100%甲醇固定，2.5 g/L结晶紫置于37℃暖箱染色30 min，显微镜下观察并拍照，计数高倍镜下5个视野的迁移细胞数，实验重复3次，取均值。
1.3 统计学方法
采用SPSS 10.0统计学软件进行数据分析，计量资料数据用均数±标准差(x±s)表示 ......
您现在查看是摘要页，全文长 4325 字符。